Composante Epigénétique de l'Epissage Alternatif

Dynamique du génome

L’épissage alternatif est un des processus biologiques régulatoires les plus important au sein de la cellule eucaryote. Ce phénomène affecte plus de 90% des gènes humains et est essential pour la diversité protéique. La moindre dérégulation des programmes d’épissage, qui sont hautement tissu-spécifique, peut mener à des états cellulaires préjudiciables, tel que le cancer. Toutefois, les mécanismes de cette régulation tissus-spécifique de l’épissage alternatif demeurent majoritairement inconnus.

De manière inattendue, au cours des 20 dernières années, la chromatine ainsi que les modifications épigénétiques des histones se sont révélées comme importantes dans la régulation de l’épissage alternatif. En particulier, nous avons démontré que les long ARNs non-codants ainsi que les modifications d’histones peuvent communiquer avec la machinerie d’épissage à travers le recrutement de complexes adaptateurs-chromatine.

Notre groupe cherche ainsi à obtenir une meilleure compréhension du rôle de la chromatine, des « enhancers » et des longs ARNs non-codants dans la mise en place et la maintenance des programmes d’épissage tissu-spécifique. Pour ce faire, nous utilisons comme modèle cellulaire la transition épithélio-mésenchymateuse (EMT) de cellules mammaires humaines ce qui nous permet d’étudier la régulation de l’épissage alternatif au cours d’une reprogrammation cellulaire inductible. De plus, nous utiliserons les dernières approches de séquençage à l’échelle du génome combiné avec des outils classiques de biologie cellulaire et moléculaire afin de décrypter les mécanismes moléculaires gouvernant la régulation tissu-spécifique de l’épissage alternatif au sein d’un modèle cellulaire ayant un rapport direct avec l’étiologie du cancer, l’EMT.

Figure 1

The regulation of alternative splicing is a multilayer process in which chromatin (in blue), long non-coding RNAs (in purple) and RNA binding factors (in orange) work in an integrated way to establish the final splicing outcome.

 

Tristan Espie-Caullet
Tristan ESPIE-CAULLET
Doctorant

0434359912

Publications de l'équipe

Histone marks are drivers of the splicing changes necessary for an epithelial-to-mesenchymal transition

Alexandre Segelle, Yaiza Nunez-Alvarez, Andrew J Oldfield, Kimberly M Webb, Philipp Voigt, Reini F Luco

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A cell-to-patient machine learning transfer approach uncovers novel basal-like breast cancer prognostic markers amongst alternative splice variants

Jean-Philippe Villemin, Claudio Lorenzi, Marie-Sarah Cabrillac, Andrew Oldfield, William Ritchie & Reini F. Luco

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Splicing-associated chromatin signatures: a combinatorial and position-dependent role for histone marks in splicing definition.

Agirre E, Oldfield AJ, Bellora N, Segelle A, Luco RF

SETDB1-dependent heterochromatin stimulates alternative lengthening of telomeres

Gauchier M, Kan S, Barral A, Sauzet S, Agirre E, Bonnell E, Saksouk N, Barth TK, Ide S, Urbach S, Wellinger RJ, Luco RF, Imhof A and Déjardin J


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SETDB1-dependent heterochromatin stimulates alternative lengthening of telomeres

Gauchier M, Kan S, Barral A, Sauzet S, Agirre E, Bonnell E, Saksouk N, Barth TK, Ide S, Urbach S, Wellinger RJ, Luco RF, Imhof A and Déjardin J


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Retrotransposons jump into alternative-splicing regulation via a long noncoding RNA

Luco RF

A lncRNA regulates alternative splicing via establishment of a splicing-specific chromatin signature

Gonzalez I, Munita R, Agirre E, Dittmer TA, Gysling K, Misteli T, Luco RF.

Epigenetics in alternative pre-mRNA splicing

Luco RF, Allo M, Schor IE, Kornblihtt AR, Misteli T.

Regulation of alternative splicing by histone modifications

Luco RF, Pan Q, Tominaga K, Blencowe BJ, Pereira-Smith O, Misteli T.

Thèses et hdr

Approche à large échelle visant à détecter de nouveaux régulateurs de l'epissage alternatif au cours de la transition épithélio-mésenchymateuse. 24/11/2020

Soutenue par Jean-Philippe Villemin le 24/11/2020 sous la direction de Reini Fernandez de luco et de William Ritchie

AGIRRE Eneritz
AGIRRE Eneritz
Chercheur
BARDOU Florian
BARDOU Florian
Chercheur
GONZALEZ Inma
GONZALEZ Inma
Chercheur
LUCO Reini
LUCO Reini
Chercheur
MICHELLE Laetitia
MICHELLE Laetitia
Chercheur
NUNEZ-ALVAREZ Yaiza
NUNEZ-ALVAREZ Yaiza
Chercheur
SEGELLE Alexandre
SEGELLE Alexandre
Doctorant
CLAUDE Elsa
CLAUDE Elsa
ITA
MARTINEZ Susan
MARTINEZ Susan
ITA
VILLEMIN Jean-Philippe
VILLEMIN Jean-Philippe
ITA

Projets

 

Un code histone pour l’épissage alternatif

(Eneritz Agirre et Jean-Philippe Villemin)

Prenant avantage des données de ChIP-seq et de RNA-seq à l’échelle du génome générées par ENCODE et le projet ROADMAP Epigenomic, nous identifions les signatures chromatiniennes qui marquent différemment les exons inclus ou exclus et ce que ces évènements ont en commun entre eux, tels que les motifs de fixation à l’ARN. Notre but est d’améliorer les algorithmes de prédiction de l’épissage alternatif actuels tout en ajoutant l’information inclue au niveau de la chromatine.

Figure 2

Histone modifications differentially mark, in a combinatorial way, alternatively spliced exons, which in turn has an impact on the recruitment of the splicing regulators to the pre-mRNA via chromatin-adaptor complexes and/or modulation of RNA Polymerase II elongation rate.

 

Un rôle dynamique pour les marques d’histones au sein de l’épissage alternatif EMT-dépendant

(Alexandre Segelle et Jean-Phillipe Villemin)

Au cours de l’EMT, il existe un changement progressif du niveau d’inclusion de certains exons qui corrèlent avec des changements d’enrichissement de modifications d’histones spécifiques, tels que H3K36me3, H3K4me1 ou H3K27me3. De plus, l’ensemble des marques d’histones ne change pas simultanément, avec certaines marques étant modifiées dès que les premiers changements d’épissage sont observés tandis que d’autres marques ne changent que plus tard, suggérant une interaction dynamique entre ces deux niveaux de régulation. Au sein de ce projet, nous combinerons du ChIP-seq à l’échelle du génome avec des approches de biologie cellulaire et moléculaire plus traditionnelles afin d’identifier et de corréler au cours du temps les changements de chromatine avec les modifications d’épissage au cours de l’EMT. Comme preuve finale d’un rôle de ces marques d’histone dans l’épissage EMT-dépendant, nous adapterons le système CRISPR/dCas9 afin d’éditer l’épigénome de manière exon-spécifique et ainsi tester son effet sur l’épissage alternatif.

Figure 3

By correlating in time (T0, T1, T6, T21 days) the genome-wide changes in alternative splicing, lncRNAs expression levels and histone modification enrichment levels during the establishment and maintenance of a new EMT-specific splicing program, we will identify novel regulators of splicing that will be further studied with more mechanistic approaches.

 

Le rôle des « enhancers » dans la régulation de l’épissage alternatif

(Andrew Oldfield)

Récemment, il a été suggéré que des exons étant soumis à l’épissage alternatif interagissent physiquement avec des séquences de régulation distales grâce à la conformation tridimensionnelle de la chromatine. Cependant, une véritable démonstration d’un lien fonctionnel entre ces 2 phénomènes n’a, à ce jour, jamais été établi. Nous cherchons à adresser cette possibilité en utilisant des analyses de capture de la conformation de la chromatine (4C-seq), couplées au ChIP-seq de modifications d’histones, afin d’identifier les exons alternativement épissés interagissant avec des enhancers au cours de l’EMT. Ensuite, nous adapterons le système CRISPR/dCas9 afin de modifier l’activité de ces enhancers et observer leur effet sur l’épissage alternatif.

Figure 4

Recently, enhancers have been shown to physically interact with alternatively spliced exons, but with no prove of a functional link. We propose that enhancers can target to the regulated exons, chromatin regulators that by protein-protein interaction can favor the recruitment of the splicing factors to the pre-mRNA, modulating like this the final splicing outcome.